اخبار و اعلانات
آمار
| تعداد نشریات | 20 |
| تعداد شماره‌ها | 349 |
| تعداد مقالات | 2,876 |
| تعداد مشاهده مقاله | 3,280,453 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 2,414,726 |
Determination of the optimized culture medium and growth conditions for micropropagation of Persian oak (Quercus brantii L.) | ||
| Iranian Journal of Genetics and Plant Breeding | ||
| مقاله 1، دوره 7، شماره 1 - شماره پیاپی 13، تیر 2018، صفحه 1-8 اصل مقاله (1.17 M) | ||
| نوع مقاله: Research paper | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.30479/ijgpb.2019.8507.1192 | ||
| نویسندگان | ||
| Raziye Salari1؛ Afagh Tabandeh Saravi* 2؛ Kazem Kamali Aliabad3 | ||
| 1Department of Watershed, Faculty of Natural Resources and Desert Studies, Yazd University, Yazd, Iran | ||
| 2Department of Environmental Science, Faculty of Natural Resources and Desert studies, Yazd University, P. O. Box: 89195-741, Yazd, Iran | ||
| 3Department of Arid Land and Desert Management, Faculty of Natural Resources and Desert studies, Yazd University, Yazd, Iran | ||
| تاریخ دریافت: 22 اسفند 1396، تاریخ بازنگری: 14 اسفند 1397، تاریخ پذیرش: 13 بهمن 1397 | ||
| چکیده | ||
| The aim of this investigation was micropropagation of Quercus brantii L. via culture of terminal and lateral buds for mass production of this plant. The plant materials were collected from Fars province Iran in spring and summer seasons. After surface sterilization and the removal of phenol materials from the explants, they were transferred into different culture media containing different concentrations of Indole-3-butyric acid and 6-benzyladenine as plant growth regulators. The results showed that 90 seconds sterilization with HgCl2 (0.1% concentration) was suitable for contamination control. In order to remove phenol materials, floating explants in 100 mg ascorbic acid solution and 100 ml distilled water showed, the best result. The results also showed that the Woody Plant Medium (WPM) containing 0.1 mg/l 6-benzyladenine (BA) and 0.01 mg/l Indole-3-butyric acid (IBA) was suitable to establish this species with the highest survival rate. The highest number of proliferation was obtained in the Woody Plant Medium culture containing 0.7 mg/l 6-benzyladenine and 0.01 mg/l Indole-3-butyric acid. Also, the best rooting treatments were successfully achieved by using Woody Plant Medium containing 1 mg/l Indole-3-butyric acid. All experiments were carried out under growth chamber conditions with light intensity of 2500-3000 lux with 8 hours of dark period at 24-25 ºC. Totally, the results of this study showed an adequate potential of Persian oak for mass production by tissue culture in order to reconstruct Zagros oak forests and also for breeding tasks. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| Adaptation؛ Proliferation؛ Quercus brantii L؛ Rooting؛ Tissue culture | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| تعیین محیط کشت و شرایط رشد بهینه برای ریزازدیادی بلوط ایرانی (Quercus brantii L.) | ||
| نویسندگان [English] | ||
| راضیه سالاری1؛ آفاق تابنده ساروی2؛ کاظم کمالی علی‌آباد3 | ||
| 1گروه مرتع و آبخیزداری، دانشکده منابع طبیعی و کویر شناسی، دانشگاه یزد، یزد، ایران | ||
| 2گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و کویر شناسی، دانشگاه یزد، یزد، ایران، کدپستی: 741 – 89195 | ||
| 3گروه مدیریت مناطق خشک و بیابانی، دانشکده منابع طبیعی و کویر شناسی، دانشگاه یزد، یزد، ایران | ||
| چکیده [English] | ||
| هدف از تحقیق حاضر، ریزازدیادی گونة بلوط ایرانی (Quercus brantii L.) از طریق کشت جوانه های جانبی و انتهایی برای تولید انبوه آن است. مواد گیاهی در فصول بهار و تابستان از رویشگاه های استان فارس در ایران جمع‌آوری گردید. نمونه ها پس از ضدعفونی سطحی و رفع مواد فنولی، در محیط کشت‌های مختلف حاوی غلظت های متفاوت از اکسین IBA و سایتوکنین BA بهجای تنظیم کننده های رشد انتقال یافتند. نتایج نشان داد ضدعفونی با استفاده از کلرید جیوه در غلظت 1/0 درصد به مدت 90 ثانیه برای کنترل آلودگی مناسب بود. به‌منظور رفع مواد فنولی، غوطه‌وری ریزنمونه‌ها در محلول حاوی 100 میلیگرم اسیدآسکوربیک در 100 سی‌سی آب مقطر بهترین نتیجه را نشان داد. همچنین محیط کشت WPM حاوی 1/0 میلیگرم در لیتر BA و01/0 میلیگرم در لیتر IBA مناسب استقرار این گونة گیاهی بود که بیشترین زنده‌مانی را به همراه داشت. بیشترین تعداد شاخه زایی در محیط کشت WPM همراه با 7/0 میلیگرم در لیتر هورمون BA و 01/0 میلیگرم در لیتر هورمون IBA صورت گرفت. بهترین تیمار ریشه‌زایی نیز در محیط کشت WPM همراه با 1 میلیگرم در لیتر، هورمون IBA بهدست آمد. کلیه آزمایش ها در اوضاع رشد کنترل شده با نور 3000-2500 لوکس و طی یک دورة تاریکی 8 ساعتی در روز و دمای 25-24 درجة سانتیگراد انجام شد. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| کشت بافت, شاخه زایی, بلوط ایرانی, ریشه‌زایی, سازگاری | ||
| مراجع | ||
|
Abravesh Z., Asareh M. H., and Emam M. (2013). Micropropagation of Eucalyptus occidentalis Endl. Iranian Journal of Forest, 5(3): 271-280. (in Persian) Bon M. C., Gendraud M., and Franclet A. (1988). Roles of phenolic compounds on micropropagation of juvenile and mature clones of Sequoiadendron giganteum influence of activated charcoal. Scientia Horticulture, 34: 283-291. Chalupa V. (1988). Large scale micropropagation of Quercus robur L. using adenine-type cytokinins and thidiazuron to stimulate shoot proliferation. Biology of Plants, 30: 414-421. Chalupa V. (1993). Vegetative propagation of oak (Quercus robur and Q. petraea) by cutting and tissue culture. Annals of Forest Science, 50(1): 295-307. Chalupa V. (1984). In vitro propagation of oak (Quercus robur L.) and linden (Tilia cordata MILL.). Biologia Plantarum (Praha), 26(5): 374-377. Chalupa V. (1987). European hardwoods. In: Bonga J. M., and Durzan D. J. (Eds.). Cell and Tissue Culture in Forestry. Case Histories: Gymnosperms, Angiosperms and palms, martinus Nijhoff Publishers, Dordrecht, 3: 224-246. Compton M. E., and Preece J. E. (1986). Exudation and explant establishment. Newslett Internnational Association of Plant Tissue Culture, 50: 9-18. Emam M., and Asareh M. H. (2010). Micropropagation of mature and seedling specimen of Eucalyptus globulus. Iranian Journal of Forest, 2(2): 139-149. (in Persian) Evers P., Vermeer E., and Eeden S. (1993). Rejuvenation of Quercus robur. Annals of Forest Science, 50(Suppl)1: 330-335. Fayyaz P., Nabavi Goldeh S. S., and Dehdari M. (2014). Micropropagation of brant oak (Quercus brantii Lindl.) from apical segment s of early spring expanding shoots. Journal of Zagros Forests Research, 1(1): 19-35. (in Persian) Hernandez I., Celestino C., and Toribio M. (2003). Vegetative propagation of Quercus suber L. by somatic embryogenesis. Plant Cell Reports, 21: 759-764. Hosseini A., Moayeri M. H., and Haidari H. (2008). Effect of Site Elevatoin on Natural Regenaration and other characteristics of oak (Quercus brantii) in the hyanan’s forest, Ilam. Journal of Agricultural Sciences and Natural Resources, 15(1): 1-11. Koneshlu H. (2001). Forest planting in aridland. Research Institute of Forests and Rangelands of Iran press, Tehran. (in Persian) Li-Hua Z., Xiao-Qin W., Hong-Ye Q., Jing J., and Jian-ren Y. (2010). Micropropagation of Pinus massoniana and mycorrhiza formation in vitro. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 102: 121-128. Marks T. R., and Simpson S. E. (1990). Redused phenolic oxidation at culture initiation in vitro following the exposure of field-grown stockplants to darkness or low levels of irradiance. Journal of Horticulture Sciences, 65: 103-111. Mohan Jainne S., and Hӓggman H. (2007). Protocols for micropropagation of woody trees and fruits. Springer Verlag, 85-91. Murashige T., and Skoog M. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiologia Plantarum, 15: 473-497. Naderi Shahab M. (2013). Oaks of Iran. Azadpeyma Press, Tehran. (in Persian) Naujoks G., Ewald D., and Matschke J. (1987). In vitro kultivierung von Populus spec. Beitr Forstwirtshaft, 21: 102-106. Ndakidemi C. F., Mneney E., and Ndakidemi P. A. (2014). Effects of ascorbic acid in controlling lethal browning in vitro culture of Brahylaena huillensisusing nodal segments. American Journal of Plant Sciences, 5: 187-191. Ozcan T. (2006). Total protein and amino acid compositions in the acorns of turkish Quercus L.taxa. Genetic Research and Crop Evolution, 53: 419-429. Pasquini S., Braidot E., Petrussa E., and Vianello A. (2011). Effect of different storage conditions in recalcitrant seeds ofholm oak (Quercus ilex L.) during germination. Seed Science and Technology, 39(1): 165-177. Pierik R. L. M. (2011). In vitro culture of higher plants. Mashhad Ferdowsi University, edition 6, Mashhad. Ostrolucka M. G., Gajdosova A., and Libiakova G. (2007). Protocol for micropropagation of Quercus. 85–91. In: Jain S. M., and Haggman H. (Eds.). Protocols for micropropagation of woody trees and fruits, Springer, Dordrecht, pp. 562. Torres K. C. (2012). Tissue culture techniques for horticultural crops. 1989rd edn. Springer. Vengadesan G., Pijut P. M. (2009): in Vitro propagation of northern red oak (Quercus rubra L.). Plant Cell Tissue and Organ Culture, 45: 474-482. Vieitez A. M., Corredoira E., Ballester A., Muñoz F., Durán J., and Ibarra M. (2009). In vitro regeneration of important North American oak species Quercus alba, Quercus bicolor and Quercus rubra. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 98(2): 135-145. Vieitez A. M., San-José M. C., and Vieitez E. (1985). In vitro plantlet regeneration from juvenile and mature Quercus robur L. Journal of Horticultural Sciences, 60: 99-106. Zamani S. M., Emam M., Mohammadi-Goltappe E., and Safaie N. (2012). In vitro propagation of Quercus castaneifolia. Iranian Journal of Rangelands and Forests Plant Breeding and Genetic Research, 20(2): 240-252. (in Persian) | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 377 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 447 |
||